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细胞技术专题:细胞传代实验

更新时间:2014-03-03 浏览次数:883

根据细胞生长的恃点,传代方法有3种:悬浮生长细胞传代、半悬浮生长细胞传代(Hela细胞)、贴壁生长细胞传代。

实验方法

  • 细胞培养技术
  • 消化法
实验方法原理培养细胞传代根据不同细胞采取不同的方法。贴壁生长的细胞用消化法传代;部分贴壁生长的细胞用直接吹打可传代;悬浮生长的细胞可以采用直接吹打或离心分离后传代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打传代。
实验材料

细胞

试剂、试剂盒

D-Hanks液 小牛血清 RPMI1640 双抗 胰蛋白酶 EDTA NHCl NaHCO3

仪器、耗材

净化工作台 离心机 恒温水浴箱 冰箱 倒置相差显微镜 培养箱 吸管 玻璃瓶 培养瓶 废液缸 吸头 枪头 胶塞 离心管 量加样枪 红血球计数板

实验步骤

1.  贴壁细胞的消化法传代:


(1)吸除或倒掉瓶内旧培养液。


(2)D-Hanks液洗2~3次。

 

(3)向瓶内加入适量消化液(胰蛋白酶或与EDTA混合液)轻轻摇动培养瓶,使消化液流遍所有细胞表面。

(4)然后吸掉或倒掉消化液后再加适量新的消化液,轻轻摇动再倒掉大部分消化液,仅留少许进行消化(也可不采用上述步骤直接加消化液进行消化)。

 

(5)消化在37℃或室温25℃以上环境下进行。

(6)消化2~5 min 后把培养瓶放置显微镜下进行观察,发现胞质回缩,细胞间隙增大后,应立即终止消化。

 

(7)吸除或倒掉消化液,如用EDTA消化,需加Hanks液数毫升,轻轻转动培养瓶把残留消化液冲掉。

(8)再加培养液。如仅用胰蛋白酶可直接加少许含血清的培养液,终止消化。

 

(9)用弯头吸管,吸取瓶内培养液,反复吹打瓶壁细胞,吹打过程要顺序进行。

(10)从培养瓶底部一边开始到另一边结束,以确保所有底部都被吹到,使细胞脱离瓶壁后形成细胞悬液。吹打时动作要轻柔不要用力过猛。 

 

(11)计数,分别接种在新的培养瓶内。

 

2.  悬浮细胞的传代:悬浮细胞传代可离心收集细胞后传代,或直接传代。


离心传代法:


(1)将细胞连同培养液一并转移到15 ml 离心管内。

 

(2)离心800~1000 rpm,5 min。

 

(3)弃去上清,加新的培养液到离心管内,用吸管吹打形成细胞悬液。

 

(4)计数,分别接种在新的培养瓶内。

 

(5)直接传代即让悬浮细胞慢慢沉淀在瓶底后,将上清液吸掉1/2~2/3,然后用吸管吹打形成细胞悬液后再传代。


3.  部分贴壁细胞的传代


(1)部分贴壁不牢的细胞,如Hela细胞等,不经消化处理直接吹打可使细胞从壁上脱落下来,而进行传代。

(2)对绝大部分贴壁生长的细胞,因直接吹打对细胞损伤较大,细胞常有较大数量的丢失,因而需消化后,才能吹打传代。

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注意事项

1.  胰蛋白酶要预温,温度37℃左右为宜℃。


2.  离心转速要合适,转速过低,不能有效分离细胞,离心速度过大,时间过长,会挤压细胞造成损伤甚至死亡。


3.  要定时观察细胞,发现污染,应及时处理。

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